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教师主页 团队成员 科研项目 研究领域 学术成果 教学 科研分享 新闻动态 疼痛医学中心 成果介绍 软件 毕业去向 加入我们 联系我们 黄安诚 Google Scholar ResearcherID 副教授 生物系 黄安诚，生物系副教授，博士生导师。黄博士于2014年底在澳大利亚阿德莱德大学获得天然产物有机化学博士学位，博士论文获阿德莱德大学院长卓越论文奖。2015年在澳门科技大学中药质量国家重点实验室从事短暂工作后，获得欧盟玛丽居里个人奖金的资助在英国约翰英纳斯中心从事植物代谢和合成生物学研究，2019年8月全职回国加入南方科技大学生物系任助理教授，2021年1月起任副教授。黄博士一直致力于植物代谢和天然产物研究。以第一作者身份在Science， PNAS和 Angew. Chem. In. Ed. 等国际顶尖学术期刊发表论文多篇。现担任天然产物国际学术期刊《Natural Product Reports》和《Frontiers in Plant Science》客座编辑，也是国际学术期刊Nature Chemistry、Nature Communication、PNAS、Angew. Chem. Int. Ed., Molecular Plant, The EMBO Journal、New Phytologist、JIPB、Plant Communication、Journal of Experimental Botany等的独立审稿人和中国、英国、以色列和荷兰人才和基金项目评审人。黄安诚博士拥有化学和生物学多学科交叉研究背景，正依托南方科技大学生命科学学院、广东省高等教育植物细胞工厂分子设计重点实验室和植物与食品研究所，利用和开发多组学方法发现与解析植物(特别是药用植物)小分子天然产物生物合成途径，揭示植物代谢相关生物学意义，并开发合成生物学体系高效合成生产高价值天然产物。  工作经历： 2021.1-至今，南方科技大学生物系，副教授 2019.08 - 2020.12，南方科技大学生物系，助理教授 2015 - 2019， 英国约翰英纳斯中心，博士后 2015， 澳门科技大学中药质量控制国家重点实验室，博士后 学习经历： 2010-2014，澳大利亚阿德莱德大学，博士 2009-2010，华南理工大学，硕士研究生（保送） 2005-2009，华南农业大学，学士 所获荣誉： 2020年，海外高层次人才 青年项目 2019年，深圳市孔雀计划B类人才 2019年，深圳市国家级领军人才 2019年，欧盟专家库成员 2016年，欧盟玛丽居里学者 2014年，阿德莱德大学院长卓越博士论文奖 2009年, 华南农业大学‘红满堂’优秀本科生 个人简介 个人简介 研究领域 • 天然产物生物合成途径发现与解析 • 植物功能基因组学和代谢组学 • 合成生物学和代谢工程 • 酶学催化反应机理和酶工程改造 • 小分子化合物介导的植物-微生物互作 学术成果 查看更多 发表文章： [28] Hong, Y.#; Yu, Z.#; Zhou, Q.; Chen C.; Hao, Y.; Zhu, J.; Guo, H.; Huang, A.C.* 2023, submitted. [27] Wu J., Chen Y., Huang Y., Hao B., Dai S., Zhao L., Zhao Z., Zhao C., Zhang L., Li Y., Xu X., Li N., Huang A.C., Zhou J., Tan M., Zhu W.*, Zhao Q.* The cytosolic aminotransferase VAS1 coordinates aromatic amino acid biosynthesis and metabolism. Science Advances, 2024, 10 (2), eadk0738.  [26] Zhou, Q.; Sun, P.; Xiong, H.-M.; Xie, J.; Zhu, G.-Y.; Tantillo, D.J.; Huang, A.C.* Insight into neofunctionalization of 2,3-oxidosqualene cyclases in B,C-ring-opened triterpene biosynthesis in quinoa. New Phytologist, 2024, 241 (2), 764-778. [25] Mu, J.; Xue, C.; Fu, L.; Yu, Z.; Nie, M.; Wu, M.; Chen, M.; Liu, K.; Bu, R.; Huang, Y.; Yang, B.; Han, J.; Jiang, Q.;  Chan, K.C.; Zhou, R.; Li, H.; Huang, A.; Wang, Y.*; Liu, Z.* Conformational cycle of human polyamine transporter ATP13A2. Nature Commucations, 2023, 14(1), 1978. [24] Liu, X.; Zhang, P.; Zhao, Q.; Huang, A.C.* Making small molecules in plants: a chassis for synthetic biology-based production of plant natural products. Journal of Integrative Plant Biology, 2023, 65(2).417-443. [23] Xie, Y.; Zhu, Y.; Wang, N.; Luo, M.; Ota, T.; Guo, R.; Takahashi, I.; Yu, Z.; Aizezi, Y.; Zhang, L.; Yan, Y.; Zhang, Y.; Bao, H.; Wang, Y.; Zhu, Z.; Huang, A.C.; Zhao, Y.; Asami, T.; Huang, H.*; Guo, H.*; Jiang, K.* Chemical genetic screening identifies nalacin as an inhibitor of GH3 amido synthetase for auxin conjugation. Proceedings of the National Academy of Sciences, U.S.A., 2022, 119(49), e2209256119. [22] Yu, J.; Tu, X.; Huang, A.C.* Functions and biosynthesis of plant signaling metabolites mediating plant-microbe interactions. Natural Product Reports, 2022, 39, 1393 – 1422. （Outside front cover） [21] Thimmappa, R.; Wang, S.; Zheng, M.; Misra, R.; Huang, A.C.; Saalbach, G.; Chang, Y.; Zhou, Z.; Hinman, V.; Bao, Z.; Osbourn, A. Biosynthesis of saponin defensive compounds in sea cucumbers. Nature Chemical Biology, 2022, 18(7), 774-781. [20] Hao, Y.; Hong, Y.; Guo, H.; Qin, P.; Huang, A.; Yang, X.; Ren, G. Transcriptomic and metabolomic landscape of quinoa seed germination. BMC Plant Biology, 2022, 22(1), 1-13. [19] Luo, F.#; Yu, Z.#; Zhou, Q.* ;  Huang, A.C.* Multi-Omics-Based Discovery of Plant Signaling Molecules. Metabolites, 2022, 12, 76. [18] Hong, Y.#; Zhou, Q.#; Hao, Y.; Huang, A.C.* Crafting the plant root metabolome for improved microbe-assisted stress resilience. New Phytologist, 2022, 234(6), 1945-1950. (One of the top 10 most downloaded papers in Wiley!) [17] Liu, Xin; Jing Fu; Ji Yang; Ancheng C. Huang; Run-Feng Li; Li-Ping Bai; Liang Liu; Zhi-Hong Jiang; and Guo-Yuan Zhu. Linderaggrenolides A–N, Oxygen-Conjugated Sesquiterpenoid Dimers from the Roots of Lindera Aggregata. ACS Omega, 2021, 6(8): 5898–5909.  [16] Bai, Y; Calvo, P. F.; Ritter, A.; Huang, A.C.; Herrera, S.M.; Bicalho, K.U.; Karady, M.; Pauwels, L.; Buyst, D.; Njo, M.; Ljung, K.; Martins, J.C.; Vanneste, S.; Beeckman, T.; Osbourn, A.; Goossens, A.; Pollier, J. Modulation of Arabidopsis root growth by specialized triterpenes. New Phytologist, 2020, doi:10.1111/nph.17144 [15] Zhou, Q.; Huang, A.C.* Recent progress on modulation of microbiota by plant root metabolites. Plant Physiology Journal. 2020, 56(11):2288-2295. [(In Chinese) 周倩,黄安诚*. 植物根系化合物调控微生物菌群研究进展.植物生理学报.2020, 56(11):2288-2295] [14] Huang, A.C.#; Chen,C.Y.#; Wang, J.Y.; Jiang, Z.H. Three new C21 steroidal glycosides from Tylophora atrofolliculata. Phytochemistry Letters, 2020, 36, 111-114 (# Co-first author) [13] Huang, A.C.#; Jiang, T.#; Liu, Y.X.; Bai, Y.C.; Reed, J.; Qu, B; Goossens, A.; Nutzmann, H.-W.; Bai, Y.; Osbourn, A. A specialized metabolic network selectively modulates Arabidopsis root microbiota. Science, 2019, 364(6440): eaau6389. (# Co-first author) [12] Huang, A.C., Osbourn, A. Plant terpenes that mediate below‐ground interactions: prospects for bioengineering terpenoids for plant protection. Pest Management Science, 2019, 75(9), 2368-2377. [11] Huang, A.C.; Hong, Y. J.; Bond, A. D.; Tantillo, D. J.; Osbourn, A. Diverged terpene synthases reroute the carbocation cyclization path towards the formation of unprecedented 6/11/5 and 6/6/7/5 sesterterpene scaffolds. Angewandte Chemie International Edition, 2018, 57(5), 1291-1295. [10] Xue Z.; Tan Z.; Huang A.; Zhou Y.; Sun J.; Wang X.; Thimmappa R. B.; Stephenson M. J.; Osbourn A.; Qi X. Identification of key amino acid residues determining product specificity of 2,3-oxidosqualene cyclase in Oryza species. New Phytologist. 2018, 218(3):1076-1088. [9] Huang, A.C.; Kautsar S. A..; Hong, Y. J.; Bond, A. D.; Madema M. H.; Tantillo, D. J.; Osbourn, A. Unearthing a sesterterpene biosynthetic repertoire in the Brassicaceae through genome mining reveal convergent evolution. Proceedings of the National Academy of Sciences, U.S.A., 2017, 114(29), E6005-6014. [8] Owen C.; Patron N. J.; Huang A.; Osbourn A. Harnessing plant metabolic diversity. Current Opinion in Chemical Biology, 2017, 40, 24-30. [7] Nützmann H.-W.; Huang A.; Osbourn A. Plant metabolic clusters-from genetics to genomics. New Phytologist. 2016, 211(3), 711-789. [6] Huang, A.-C.; Sefton, M. A.; Sumby, C. J.; Tiekink, E. R.T.; Taylor, D. K. Mechanistic studies on the autoxidation of a-guaiene: The structural diversity of the sesquiterpenoid downstream products. Journal of Natural Products, 2015, 78, 131-145. [5] Davies, C; Böttcher, C; Nicholson, E. L.; Burbidge, C. A.; Bastian, S; Harvey, K. E.; Huang, A.-C.; Taylor, D. K.; Boss, P. K. Shiraz wines made from grape berries (Vitis vinifera) delayed in ripening by plant growth regulator treatment have elevated rotundone levels and ‘pepper’ flavor and aroma. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2015, 63(8), 2137-2144. [4] Huang, A.-C.; Sefton, M. A.; Taylor, D. K. Comparison of the formation of peppery and woody sesquiterpenes derived from a–guaiene and a-bulnesene under aerial oxidative conditions. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2015, 63(8), 2137-2144 [3 Huang, A.-C.; Sumby, C. J.; Tiekink, E. R.T.; Taylor, D. K. Synthesis of guaia-4(5)-en-11-ol, guaia-5(6)-en-11-ol, aciphyllene, 1-epi-melicodenone C and E and other guaiane-type sesquiterpenoids via the diastereoselective epoxidation of guaiol. Journal of Natural Products, 2014, 77(11), 2522-2536. [2] Huang, A.-C.; Burrett, S.; Sefton, M. A.; Taylor, D. K. Production of the pepper aroma compound, (-)-rotundone by aerial oxidation of α-guaiene. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2014, 62 (44), 10809–10815. [1] Huang, A.-C.; Wilde, A.; Ebmeyer, J.; Skouroumounis, G. K.; Taylor, D. K. Examination of the phenolic profile and antioxidant activity of the leaves of the Australian native plant Smilax glyciphylla. Journal of Natural Products, 2013, 76 (10), 1930-1936. 书籍章节  [1] Huang, A.C.*; Nützmann, H.-W*. Chromatin Analysis of Metabolic Gene Clusters in   Plants. Method in Molecular Biology, 2020, 2093, 129-146. (*Co-corresponding author) 新闻动态 更多新闻 生物系植物细胞工厂分子设计省级重点实验室获批 2020-04-20 我校生物系组织“实验室开放日”活动 2019-10-31 生物系建立首个校外实践基地 2019-10-31 团队成员 查看更多 PrevNext UpDown 加入团队 黄安诚课题组招聘招生 课题组常年招聘博士后和博士生候选人（科研助理），欢迎对课题组研究感兴趣的优秀学者和硕士博士研究生加入开展代谢和合成生物学相关的交叉学科研究，欢迎来信咨询。  博士后应聘条件1）有化学（天然产物化学或分析化学）、遗传学、分子生物学、生物信息学相关专业的博士学位和相关研究背景，对本课题组研究方向感兴趣。2）热爱科研工作、为人踏实、有团队合作意识、积极勤奋、能独立思考和开展工作。3）与课题组长共同制定研究计划，积极开展相关课题研究。4）协助建立实验室常规实验系统，协助培养硕士/博士研究生。5）英语水平优秀、有海外学习或工作经历者优先。6）有植物代谢和多组学（特别是代谢组学）相关研究经验者优先。 博士后薪酬待遇：博士后年薪33.5万元，含广东省补助15万元（税前）及深圳市生活补助6万元（税后），并按深圳市有关规定参加社会保险及住房公积金。博士后福利费参照学校员额内教职工标准发放。其他待遇政策： 特别优秀者可以申请校长卓越博士后，年薪可达41.5万元（含广东省及深圳市补助）； 课题组提供优良的工作环境和境内外合作交流机会，博士后在站期间享受两年共计2.5万学术交流经费资助； 根据博士后具体科研工作业绩情况，可享受院系、课题组相应的科研绩效奖励； 课题组提供充足的科研支持，并协助博士后本人作为负责人申请中国博士后科学基金、国家自然科学基金及广东省、深圳市各级科研项目； 课题组可协助符合条件的博士后申请“广东省海外青年博士后引进项目”。即在世界排名前200名的高校（不含境内，排名以上一年度泰晤士、USNEWS、QS和上海交通大学的世界大学排行榜为准）获得博士学位，在广东省博士后设站单位从事博士后研究，并承诺在站2年以上的博士后，申请成功后省财政给予每名进站博士后资助60万元生活补贴；对获得本项目资助，出站后与广东省用人单位签订工作协议或劳动合同，并承诺连续在粤工作3年以上的博士后，省财政给予每人40万元住房补贴。 博士后出站选择留深从事科研工作，且与本市企事业单位签订3年以上劳动（聘用）合同的，可以申请深圳市博士后留深来深科研资助。深圳市政府给予每人30万元的科研启动经费资助； 对于落户深圳的博士后，可以按博士落户的身份向深圳市申请一次性租房和生活补贴3万元（免税，自主网上申请）； 依据自身符合的条件情况，协助在站或出站留深博士后申请"深圳市后备级人才"，享受5年160万的奖励津贴（免税）； 对于优秀的出站博士后将积极推荐协助其申请南方科技大学研究助理教授等岗位。研究助理教授 1）具有较强的遗传学和分子生物学背景，在相关领域有一定的研究实力和成果；2）有团队合作意识、为人踏实、积极勤奋。3）与课题组长一起制定研究计划、协助管理实验室、指导博士后、硕士/博士研究生。4）可以独立申请研究经费。5）其它要求不低于博士后岗位标准。待遇：a）享受正式教职工待遇； b）薪酬一事一议；c）符合条件者，协助申请深圳市政府高层次人才（160-300万免税补贴）；d）可以申请深圳户口，解决子女入托入学问题。应聘方式：个人简历，含学习、工作经历、发表论文等（拟报考研究生者请注明本科及硕士期间GPA）；申请博士后需要提供2-3位推荐人的联系方式。应聘者请将以上应聘材料及认为有用的其他能证明能力的所有材料整合为单个PDF，发至邮箱huangac@sustech.edu.cn。 邮件主题命名格式：“拟到岗时间+应聘岗位+姓名+年龄+性别”，如“202001+博后+张三+28岁+男”。 查看更多 联系我们 联系地址 广东省深圳市南山区学苑大道1088号南方科技大学第一科研楼337 办公电话 0755-88018496 电子邮箱 huangac@sustech.edu.cn